2023研究新知|GMI抗肺腺癌轉移的分子機制新發現:讓癌細胞綁手綁腳,使其跑不了和尚也建不了廟

2023年11月,衛福部國民健康署根據前一年的癌症登記報告公布,肺癌首度超越大腸癌,成為國人最容易發生的癌症。這個新頭銜,加上蟬聯19年國人癌症死因第一的舊頭銜,使肺癌對你我的威脅性又上升一級。同年12月,陽明交通大學傳統醫藥研究所林東毅副教授領銜發表在《Life Sciences》的「小孢子靈芝免疫調節蛋白GMI」抗肺腺癌轉移研究成果,則是透過動物、細胞與分子機制詳細說明,GMI干擾下的肺腺癌細胞是如何綁手綁腳地「跑不了和尚也不了廟」,為降低肺癌威脅性提供了錦囊妙方。

文/吳亭瑤

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https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0024320523008901?via%3Dihub

 

癌轉移的每個步驟都很關鍵

轉移對於組織器官功能的破壞,是影響肺癌患者生活品質和生命長度的主因。由於肺癌的早期症狀不易察覺,五到六成患者初次被診斷出來時多半已經晚期,使得肺癌患者承擔的轉移風險明顯高於其他癌症患者。

所謂「轉移」是指癌細胞從原發部位,經血液或淋巴循環,擴散到身體其他部位生長的過程。以經由血液循環轉移為例:癌細胞必須轉變成容易爬行且具侵襲性的細胞表型,才有辦法脫離原始腫瘤,穿越細胞外基質,來到血管周圍,鑽過(滲入)血管進入血液循環,成為所謂的「循環腫瘤細胞」。

取得入場門票之後,癌細胞還需一邊躲避白血球,一邊尋覓新生地,等到天時地利人和再黏附到血管壁上,鑽出(滲出)血管,穿越細胞外基質,然後才有機會落腳新的組織器官,另起爐灶落地生根【圖1】。

由於癌細胞需要歷經很多步驟才能轉移成功,所以每個步驟都可以成為藥物抑制癌轉移的靶點。單獨標靶其中一個步驟,很難做到全面攔截;如果可以同時干擾好幾個關鍵步驟,層層卡關,就能把漏網之魚減至最少。本研究觀察到的GMI抗肺腺癌轉移作用,恰好就屬於後者。

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【圖1】腫瘤轉移過程示意圖。
https://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/jpi.12370

 

GMI怎麼「卡關」肺腺癌轉移?

① GMI可以半路攔截,阻止血液循環裡的癌細胞落地生根

根據本研究的動物實驗,同樣是免疫功能正常的小鼠,同樣從尾部靜脈植入對艾瑞莎(吉非替尼)有抗藥性肺腺癌細胞LLC-1,後續有以GMI治療者——每四天腹腔注射一次,每次劑量10 mg/kg——肺臟和肝臟長出腫瘤的機會明顯低於未做治療的控制組【圖2】;即使長出腫瘤,腫瘤數量也明顯較少,分布範圍也明顯較小【圖3】。

注射到腹腔的GMI會經由腹膜微血管吸收進入血液循環,因此GMI組的腫瘤較小、較少,很可能是GMI干擾了血液循環中的肺腺癌細胞,使癌細胞穿越血管壁進到組織器官定居的能力大幅下降所致。這個保護作用大大削弱了肺腺癌的生命威脅——相對於控制組在癌細胞進入血液循環第31天就有小鼠死亡,不到35天就全軍覆沒,GMI組則是直到第50天仍有近七成的小鼠存活【圖3】。

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【圖2】以活體冷螢光影像系統(IVIS)偵測肺腺癌細胞從血液循環進到小鼠器官長出腫瘤的情形。結果顯示,GMI組的腫瘤生成率與生長速度遠遠低於控制組。

 

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【圖3】小鼠尾部靜脈植入肺腺癌細胞第28天肺部長出腫瘤的情形,以及小鼠尾部靜脈植入肺腺癌細胞之後在不同時間節點的存活率。結果顯示,GMI組不只腫瘤數量少,受到腫瘤侵犯的組織面積比較小,存活期較長,存活率也比較高。

 

② GMI也可先下手為強,防止癌細胞脫離原始腫瘤向外侵襲

上述實驗結果說明GMI可以在下游攔截血液循環裡的癌細胞,讓它們功敗垂成;本研究的另一個動物實驗則觀察到,GMI還能在上游「綁住」蠢蠢欲動的肺腺癌細胞,力阻癌轉移的發生。

腫瘤裡的癌細胞連結得很緊密的,當癌轉移的開關被啟動後,癌細胞的表現型態會從排列緊密、不易移動的「上皮型」,逐漸轉變成排列鬆散(容易鬆脫)、有利遷移(爬行)的「間質型」,藉由這個簡稱EMT的「上皮-間質轉化」(epithelial-mesenchymal transition)過程,逐漸增強癌細胞侵犯周邊組織的能力【圖4】。

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【圖4】癌細胞從「上皮型」轉化成「間質型」,進而脫離原始腫瘤、儲備遷移力和侵襲性的過程。(https://doi.org/10.1186/s12964-021-00713-2

 

癌細胞從穩定性高的「上皮型」轉化成侵略性強的「間質型」的過程中(以下將此過程簡稱EMT),細胞表面有助癌轉移的整合素(integrin)會顯著增加,細胞內部相關的蛋白分子表現也會有所改變,包括:

❖ 驅動EMT發生的轉錄因子(如Slug)會被活化和增加;

❖ 連結細胞與細胞之間的黏附分子也從全部都是黏性高的E-鈣黏蛋白(E-cadherin),開始出現黏性低的N-鈣黏蛋白(N-cadherin)摻雜並存;

❖ 細胞骨架中有助細胞維持硬度與彈性的波形蛋白(vimentin)也會變多。

上述這些變化都可用來評估癌轉移的動能高低。在本研究的動物實驗裡,當肺腺癌細胞(LLC-1)被植入皮下之後,每四天腹腔注射一次GMI(10 mg/kg)的小鼠,不只長出來的腫瘤明顯小於控制組(意謂發生癌轉移的本錢比較少),腫瘤組織裡和癌轉移相關的指標也明顯較少【圖5】。這說明GMI有「綁住」癌細胞的作用,使肺腺癌細胞比較不易取得轉移的能力。

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【圖5】小鼠皮下植入肺腺癌細胞3~4週後,腫瘤組織中有助推動癌轉移發生和進行的整合素,以及反映癌細胞轉型成有利脫離原始腫瘤向外侵襲的EMT指標。結果顯示,GMI組的癌轉移動能明顯低於未做任何治療的控制組(CTL)。

 

③ GMI還能從中作梗:削弱癌細胞的黏附力(抓地力)和遷移力

本研究還通過體外實驗證明GMI能夠抑制多種「人類肺腺癌細胞」的遷移能力:不管是惡性度一般的A549,還是具有高度轉移性的CL1-5,抑或EGFR雙重突變且對艾瑞莎有抗藥性的H1975,當它們與GMI(0.3 μM)一起培養24小時之後,癌細胞的遷移能力都會大幅下降【圖6】。

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【圖6】三種不同惡性度的人類肺腺癌細胞經GMI(0.3 μM)處理24小時仍具遷移能力的癌細胞數。結果顯示,癌細胞的遷移能力會因GMI的干擾而大幅降低。

 

癌細胞的遷移能力是癌轉移能否成功的重要關鍵,因為不論是癌細胞從原鄉出發「披荊斬棘」前往血管或淋巴管周邊,還是從血液循環上岸「披荊斬棘」前往新生地,都必須依靠「遷移能力」穿越細胞外基質才能抵達目的地。不過癌細胞並不是想動就能動,而是需要把它的腳(偽足)「黏附」在細胞外基質上,才能一步步地往前推進【圖7】。

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【圖7】細胞遷移的步驟。 
https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Four_steps_of_cell_migration.png#


換句話說,細胞遷移並不是唏嚦呼嚕地連滾帶爬,也不是心想事成的瞬間位移,而是要踩穩這一步才有下一步的穩步爬行。因此有如抓地力的「黏附力」就成了癌細胞能否穿越細胞外基質關鍵,如果每次伸出腳都要搞半天才踩得穩,自然會拖慢細胞遷移的速度。此外,進到血液循環的癌細胞也必須發展出有如定錨作用的「再黏附力」抓住血管壁,才有辦法鑽出血管繼續未竟的轉移之業。

由此可見黏附力對癌轉移的非常重要。而根據本研究的體外實驗顯示,GMI(0.15~0.6 μM)能在2小時內對前述三種人類肺腺癌細胞的「黏附力」和「再黏附力」發揮顯著的抑制作用,且效果與GMI濃度呈正相關【圖8】,說明GMI之所以既能抑制肺腺癌細胞遷移【圖6】,也能阻止血液中的癌細胞進到組織器官落地生根【圖2、圖3】,都與GMI降低癌細胞的黏附力密切相關。

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【圖8】三種不同惡性度的人類肺腺癌細胞經不同濃度的GMI處理2小時仍具黏附能力的細胞數。結果顯示,GMI可大幅降低癌細胞的黏附力與再黏附力。

 

GMI怎麼「綁住」肺腺癌細胞?

① GMI能結合癌細胞表面,由外而內直接調控

本研究的另一個實驗發現,GMI(0.3 μM)在加入人類肺腺癌細胞10分鐘之後即會結合在癌細胞表面【圖9】,這似乎暗示GMI可以「由外而內」直接調控癌細胞的行為模式,讓它們想壞卻壞不太起來。

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【圖9】綠色螢光為GMI,藍色為人類肺腺癌細胞A549的細胞核,紅色為細胞骨架結構中的纖維肌動蛋白(F-actin)——它們會聚集在細胞前進方向的最前端,把細胞膜向外推,形成突出的絲狀偽足(filopodia),拉動細胞往前移。相較於只有癌細胞的控制組(左圖),經GMI(0.3 μM)處理10分鐘的癌細胞表面結合了許多GMI,尤其是在絲狀偽足的位置(右圖)。

 

② GMI能下調千百種「膜蛋白」的表現量,阻擋外部誘因對於癌轉移的推進

細胞表面各式各樣的膜蛋白(細胞膜上的蛋白質)是細胞接收細胞外訊息的窗口,其表現量之高低,反映著它們對細胞行為的影響力。根據本研究對三種人類肺腺癌細胞共計5531種膜蛋白進行的分析顯示:

惡性度一般的A549細胞在GMI(0.6 μM)處理24小時後,有1868種膜蛋白的表現量顯著降低(減少25%以上);換成高度轉移性的CL1-5細胞,或是EGFR雙重突變且對艾瑞莎有抗藥性的H1975細胞,則分別有944種和994種膜蛋白的表現量會因GMI的介入而顯著降低【圖10A】。

此結果說明GMI的確能「由外而內」調控肺腺癌細胞,而且調控的細節會視肺腺癌細胞的不同而有所差異,頗有因材施教的意味。不過異中有同的是,其中106種膜蛋白不管長在這三種癌細胞的哪一個,都會被GMI下調;而根據大數據分析,這106種膜蛋白同時下調最有可能的結果,就是抑制細胞遷移與癌轉移,與細胞和動物實驗的結果遙相呼應。

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【圖10】(A) 以GMI(0.6 μM)處理人類肺腺癌細胞,24小時後表現量下降25%以上的膜蛋白數量與整合素種類。 (B) 以GMI(0.3或0.6 μM)處理人類肺腺癌細胞,2小時後細胞表面的整合素β1、αV、α5和α6表現量明顯下降,且有量效關係。

 

③ GMI能下調整合素表現、阻止FAK活化、促進Slug降解,讓癌細胞綁手綁腳

研究者進一步縮小範圍,從這106種膜蛋白找出跟癌轉移有關的「整合素」,並且配合細胞實驗實際確認GMI的影響,結果發現共有四種整合素(β1、αV、α5和α6)的表現量可以在2小時內被GMI(0.6 μM)下調50%以上【圖10B】。

這些整合素即是癌細胞可以黏附細胞外基質的主幹。當它們因為來刺激活化後,對外會連結細胞外基質裡的纖連蛋白,對內則會吸引大批蛋白質聚集在它的周圍,形成可以與細胞骨架聯動的黏著斑(focal adhesion),為細胞遷移提供必要的黏附力(抓地力)【圖11】。

其中簡稱FAK黏著斑激酶(focal adhesion kinase)是最早聚集到整合素周圍的蛋白質之一。當FAK與整合素結合後,會接著活化一大串的下游分子(包括驅動EMT發生的轉錄因子Slug),加速癌細胞的增生和轉移。

不過本研究卻發現,GMI不只能降低相關整合素的表現量,還能減少FAK被活化的機會,並把Slug送進細胞的資源回收中心分解【圖12】。前兩者會抑制黏著斑的形成,使癌細胞因為黏附力不足而不易遷移;後者則會阻止癌細胞打開「上皮-間質轉化」的開關,降低癌細胞脫離原始腫瘤向外侵襲的機會。兩相作用下讓肺腺癌細胞既綁手又綁腳,大大提高癌轉移的門檻和難度。

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【圖11】黏著斑複合物示意圖。與細胞骨架(肌動蛋白應力纖維)聯動的「黏著斑」是一個大型的蛋白複合物,由位於細胞膜上的整合素、細胞外基質的纖維蛋白,以及結合在整合素上的一百多種蛋白質(如:黏著斑激酶FAK)共同組成。由於FAK居關鍵位置,少了它將無法形成牢靠的黏著斑,癌細胞的遷移過程中就會備受阻礙。(https://www.mdpi.com/1422-0067/22/3/1358

 

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【圖12】(A) 以GMI(0.6 μM)處理人類肺腺癌細胞,細胞內磷酸化(活化)的FAK數量會隨時間下降。 (B) 以GMI(0.6 μM)處理人類肺腺癌細胞,細胞內的Slug水平隨時間下降的程度(虛線)遠超過沒有GMI(實線)的組別。

 

單一成分多重標靶,GMI抗肺腺癌轉移的潛力令人期待

不論是以整合素、FAK、Slug為靶點,還是力阻EMT的發生,都是抗癌新藥開發的方向,而且只要做到其中一點,就會被視為極具潛力的新星。如今作為單一成分的GMI【圖13】卻能多點標靶【圖14】,打破許多人對於一種成分只能標靶一個靶點的刻板印象,加上先前已被證實GMI可以標靶EGFR抑制肺腺癌腫瘤生長,無一不正中棘手肺癌的治療需求,集如此多的功能於一身,不知該給GMI幾顆星才算足夠?

誠如本文先前所言,單獨標靶其中一個步驟很難做到全面攔截,如果可以同時干擾好幾個關鍵步驟,層層卡關,就能把漏網之魚減至最少。科學證明GMI多點標靶的抗肺轉移作用無疑提醒著我們,降低肺癌威脅的「新藥」其實已經近在眼前。

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【圖13】由111個胺基酸組成的小孢子靈芝免疫調節蛋白GMI(Ganoderma microsporum immunomodulatory protein)是一個純的蛋白質。圖為GMI在蛋白質資料庫PDB(Protein Data Bank)登錄的3D結構,代號3KCW

 

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【圖14】經本研究證明的GMI抑制肺腺癌細胞轉移的細胞分子機制。

 

〔資料來源〕Hung-Chih Lo, et al. GMI, a Ganoderma microsporum protein, abolishes focal adhesion network to reduce cell migration and metastasis of lung cancer. Life Sciences, 2023 Dec 15:335:122255. doi: 10.1016/j.lfs.2023.122255.
 

〔其他參考文獻〕

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2. 賴淑敏等。癌症連41年居10大死因榜首,新冠去年1.4萬死排第3。公視新聞網,2023年6月12日發布。

3. 郭志熙醫師。四成肺癌發現時已骨轉移!? 積極治療一棒接一棒抗癌。癌症希望基會網站,2023年7月6日發布。

4. 何明霖醫師。肺癌轉移到腦骨肝。台灣肺癌病友診治衛教關懷網站,2020年8月1日發布。

5. Shih-Chi Su, et al. Cancer metastasis: Mechanisms of inhibition by melatonin. Review J Pineal Res. 2017 Jan;62(1). doi: 10.1111/jpi.12370.

6. Susan E Leggett, et al. The epithelial-mesenchymal transition and the cytoskeleton in bioengineered systems. Review Cell Commun Signal. 2021 Mar 10;19(1):32. doi: 10.1186/s12964-021-00713-2.

7. Samanthi Udayangani. Difference Between Cell Migration and Invasion. Difference Between.com. March 31, 2017 Posted.

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